尾静脉注射是基本的给药方式，不少学生会用到，这里写一下基本的方法。不同小鼠有细微差异，方法也有差异，但是最后还是得熟能生巧！这里介绍一下小黑鼠尾静脉注射。例如c57，转基因等。

小鼠固定器的选择1

这是某宝可以买到的有机玻璃的小鼠固定器，根据体重不同分类的。有机玻璃有一个缺点就是不能用酒精消毒，碰到酒精就会开裂。

小鼠固定器选择2

这种是不锈钢的小鼠固定器，也分体重，不会开裂，但看不到小鼠在里面的状态。

小鼠固定器选择3

这个是自制的尾静脉固定器，可以用酒精消毒，还可以观察注射药物时小鼠的状态。并且这个固定器的底是八角的，和外面购买的不同，小鼠装进固定器后它会动，会旋转，八角的底座可以不管小鼠如何转动，都能找到一条边靠在桌子上使小鼠静脉始终朝着自己，方便进针。

尾静脉注射的握针方法

一般新手喜欢图一的握针方法，这样对于新手来说可以很好的掌控针头的力量，但是这种握针方法存在一个缺点，当你想要推药的时候必须放开手，再换一个手势推药。在你换手势的期间，针头很容易退出来或者由于小鼠的挣扎而扎破血管。（也有人说这方法好，可以用小指头推针，手指长的可以试试。）一般人还是建议用图二的握针方，在你熟悉之后，想多好用就有多好用，进针就推药，不仅速度快，而且当你需要高压注射时，需要时间的限定，这个手势是非常好推药的。

固定

捏住小鼠尾巴，轻轻的把小鼠拉进固定器，并且盖好盖子，防止小鼠逃脱，和挣扎。

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消毒

用酒精棉球消毒需要注射的部位。

注射

部位：找到注射的尾部静脉，一般注射两侧尾静脉。

深度：15度角进针立刻水平进入，缓缓的扎深。

进针感知：当扎入血管后有一种落空感，推药无阻力。

当看不到血管时就要凭借经验推断位置和深度来进针。

止血

注射成功后，用干棉球进行止血。

同批实验鼠多次尾静脉给药靠尾巴尖开始，防止药物漏出。同批实验鼠多次尾静脉给药建议使用胰岛素针。注意注射器排净空气。视频多次剪辑上传不了，需要的请联系。

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